Le traitement systémique au fluralaner des poulets entraîne la mortalité de Triatoma gerstaeckeri, vecteur de l'agent de la maladie de Chagas

May 28, 2023

Parasites & Vecteurs volume 16, Numéro d'article : 178 (2023) Citer cet article

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La maladie de Chagas reste une maladie tropicale négligée à transmission vectorielle persistante dans toutes les Amériques et menace à la fois la santé humaine et animale. Diverses méthodes de contrôle ont été utilisées pour cibler les populations de vecteurs triatomes, les insecticides ménagers étant les plus courants. Comme alternative aux pulvérisations environnementales, les insecticides systémiques ciblés sur l'hôte (ou endectocides) permettent l'application de produits chimiques sur les hôtes vertébrés, entraînant des repas de sang toxiques pour les arthropodes (xénointoxication). Dans cette étude, nous avons évalué trois produits insecticides systémiques pour leur capacité à tuer les triatomes.

Les poulets ont reçu les insecticides par voie orale, après quoi les triatomes ont été autorisés à se nourrir des poulets traités. Les produits insecticides testés comprenaient : Safe-Guard® Aquasol (fenbendazole), Ivomec® Pour-On (ivermectine) et Bravecto® (fluralaner). Les nymphes de Triatoma gerstaeckeri ont été autorisées à se nourrir d'oiseaux vivants sous insecticide 0, 3, 7, 14, 28 et 56 jours après le traitement. La survie et l'état d'alimentation des insectes T. gerstaeckeri ont été enregistrés et analysés à l'aide des courbes de Kaplan-Meier et de la régression logistique.

L'alimentation de poulets traités au fluralaner a entraîné une mortalité de 50 à 100 % chez T. gerstaeckeri au cours des 14 premiers jours après le traitement, mais pas plus tard ; en revanche, tous les insectes qui se nourrissaient de poulets traités au fenbendazole et à l'ivermectine ont survécu. L'analyse par spectrométrie de masse en tandem par chromatographie liquide (LC-QQQ), utilisée pour détecter la concentration de fluralaner et de fenbendazole dans le plasma de poulet, a révélé la présence de fluralaner dans le plasma à 3, 7 et 14 jours après le traitement, mais pas plus tard, les concentrations les plus élevées étant trouvées à 3 et 7 jours après le traitement. Cependant, la concentration de fenbendazole était inférieure à la limite de détection à tous les moments.

La xénointoxication utilisant le fluralaner chez les volailles est un nouvel outil potentiel pour la lutte antivectorielle intégrée afin de réduire le risque de maladie de Chagas.

La maladie de Chagas, causée par le parasite protozoaire flagellé Trypanosoma cruzi, a l'une des plus lourdes charges de morbidité humaine de toutes les maladies à transmission vectorielle dans les Amériques, entraînant environ 6 469 283 cas en 2019 [1]. Le mode de transmission prédominant de T. cruzi est stercoraire impliquant des insectes triatomes (sous-famille Triatominae, Hemiptera : Reduviidae), dans lequel les stades infectieux du parasite sont excrétés avec les excréments d'insectes et pénètrent dans le vertébré par la plaie mordante ou la muqueuse [2, 3]. Certains animaux peuvent également ingérer des insectes infectés, entraînant une infection acquise par voie orale [4, 5]. T. cruzi et les triatomes ont de larges gammes d'hôtes, et les infections à T. cruzi ont été reconnues chez de nombreuses espèces de mammifères, y compris les chiens et les chats domestiques ainsi que plusieurs espèces sauvages [6,7,8,9].

La principale méthode pour réduire la maladie de Chagas consiste à réduire le contact humain avec les triatomes infectés, y compris la lutte antivectorielle, les améliorations domestiques et la gestion de l'environnement [10,11,12]. Dans les régions fortement endémiques des Amériques, les ministères locaux de la santé se sont appuyés sur l'application intérieure d'insecticide pyréthroïde résiduel pour réduire les populations domestiques de triatomes [13]. Cependant, les triatomes ont démontré une capacité de recolonisation à partir des refuges sylvatiques suite à l'arrêt des traitements insecticides [14, 15] ; de plus, la résistance aux insecticides pyréthrinoïdes [16] a entraîné des échecs de contrôle [17].

De nombreuses espèces de punaises triatomes (triatomes) jouent un rôle dans la transmission de la maladie de Chagas chez l'homme, les plus notables étant Rhodnius prolixus, Triatoma infestans et Triatoma dimidiata dans toute l'Amérique centrale et du Sud, que l'on trouve couramment dans les maisons colonisatrices [18]. Aux États-Unis, 11 espèces différentes de triatomes sont présentes dans les 28 États du sud. Sept espèces de triatomes trouvées au Texas, T. gerstaeckeri étant la plus couramment rencontrée par les humains [19]. Triatoma gerstaeckeri peut être trouvé dans des environnements sylvatiques et domestiques dans les États américains du Texas et du Nouveau-Mexique et dans le nord du Mexique [20], souvent en association avec des nids de rongeurs et de tatous, des corrals, des étables, des poulaillers et parfois des habitations humaines [19, 21]. Des études estiment que jusqu'à 55 % des T. gerstaeckeri adultes sont infectés par T. cruzi [21].

Plusieurs espèces de vertébrés jouent un rôle dans la transmission de T. cruzi, soit directement en tant que réservoirs, soit indirectement en fournissant des repas de sang de triatomes pour maintenir les populations de vecteurs. Les chiens, les chats et les poulets sont tous des hôtes courants de repas sanguins de triatomines dans le contexte du domicile et du péridomicile et peuvent amener les vecteurs en contact étroit avec les humains [23]. En particulier, les poulets se sont avérés positivement associés à l'abondance de triatomes [24]. Bien que les poulets ne soient pas des hôtes compétents pour T. cruzi [25], ils sont capables de maintenir des populations de vecteurs [24]. Les poulets sont abondants dans toutes les régions d'Amérique latine où la maladie de Chagas est endémique. La production avicole «familiale» des petits exploitants est une source majeure de protéines animales dans toute l'Amérique centrale, et les poulets sont les volailles domestiques les plus courantes dans ces régions [26, 27].

Le traitement des vertébrés fortement utilisés avec des insecticides systémiques, entraînant des repas de sang toxiques pour les triatomes - également appelés xénointoxications - peut fournir une solution pour réduire la maladie de Chagas dans les populations humaines et animales tout en minimisant les effets non ciblés de l'utilisation d'insecticides [28]. Des études récentes ont montré un succès dans la destruction des triatomes avec des insecticides ciblés sur l'hôte chez les chiens en utilisant diverses méthodes et formulations de livraison, y compris des colliers traités à la deltaméthrine, des solutions topiques et des insecticides systémiques oraux [29,30,31]. Plusieurs des méthodes utilisant l'ingrédient actif fluralaner ont montré jusqu'à 100% de mortalité des vecteurs triatomiques sud-américains qui se nourrissaient sur des hôtes traités [32, 33]. Il a été démontré que les repas de sang contenant de l'ivermectine provenant de chiens sont létaux pour les triatomines, avec le plus d'effet dans les 3 jours suivant le traitement du chien [34]. Cependant, les enquêtes sur la xénointoxication des triatomes n'ont pas auparavant pris en compte les triatomes nord-américains, et peu d'études ont étudié des hôtes autres que les chiens.

Pour explorer la faisabilité et l'efficacité d'une méthode de contrôle ciblée sur l'hôte pour gérer les populations de triatomes, nous avons évalué la survie de T. gerstaeckeri après la consommation de repas de sang provenant directement de poulets traités par voie orale avec l'un des trois ingrédients actifs suivants : le fenbendazole, l'ivermectine et le fluralaner. Les résultats de cette étude donneront un aperçu de la capacité de traiter les poulets avec des insecticides qui tuent les triatomes.

Dans cette étude, un essai a été défini comme tout événement au cours duquel des triatomines sont nourries sur des poulets vivants. Chaque essai consistait en quatre poulets, dont trois poulets dans chaque essai ont été traités avec l'un des trois insecticides et un poulet n'a pas été traité (témoin). Chaque poulet a été nourri par trois triatomines (chacune contenue individuellement). Les essais ont été menés à six moments uniques après le traitement des poulets avec un insecticide : les jours 0, 3, 7, 14, 28 et 56 jours après le traitement (DPT). Les essais au jour 0 ont été menés deux fois et les essais aux jours 3, 7, 14, 28 et 56 ont été répétés trois fois. Une série supplémentaire d'essais a été menée à 3, 7 et 14 DPT, mais a été interrompue prématurément en raison de la pratique de gestion de l'installation avicole consistant à appliquer des acaricides sur les poulets, pouvant éventuellement entrer en contact avec les oiseaux de notre étude.

Les poulets (Gallus gallus domesticus; Hy-line, W-36) utilisés pour cette étude ont été achetés auprès de l'installation Hy-Line à Bryan, Texas (Hy-Line, West Des Moines, IA, États-Unis). Les poulets étaient tous des femelles et ont éclos à la même date. Pendant la durée des expériences, les poulets étaient âgés de 18 à 38 semaines. Le poids moyen des poulets utilisés était de 1,34 kg. Les poulets étaient logés individuellement dans la Poultry Science Farm de la Texas A&M University et fournissaient quotidiennement des aliments frais (Layer Diet Formation; Texas A&M Poultry Science Center, College Station, TX, USA) et de l'eau (300 ml). Des poulets individuels n'ont été utilisés que dans un seul essai afin de minimiser les inquiétudes concernant l'immunité acquise suite à une exposition aux protéines salivaires triatomiques [35]. En raison de l'activité de mue chez les nymphes de triatomes, trois essais témoins n'ont utilisé qu'un seul triatome par poulet. Par conséquent, un total de 234 triatomes et 80 poulets ont été utilisés pendant toute la durée de l'étude.

Triatoma gerstaeckeri ont été obtenus à partir de la colonie maintenue à l'Université Texas A&M. Cette colonie a été hébergée dans une installation de quarantaine BSL2 approuvée par le Service d'inspection de la santé animale et végétale du Département de l'agriculture des États-Unis (USDA-APHIS) et a été maintenue pendant 6 ans à 27–33 ° C et 30–60% d'humidité relative [36, 37]. Les insectes utilisés dans l'étude sont des générations F2-F3 prélevées sur des populations sauvages du Texas. Du sang de lapin défibriné (HemoStat Laboratories, Dixon, Californie, États-Unis) a été fourni une fois par semaine pour l'alimentation à l'aide d'un dispositif d'alimentation à membrane Hemotek (Hemotek Ltd., Lancashire, Royaume-Uni), mais les individus sélectionnés pour les essais ont été privés de nourriture pendant 2 semaines à 1 mois [36]. Toutes les triatomines étaient logées dans des récipients en plastique doublés de papier filtre (Whatman plc, Maidstone, Royaume-Uni), chaque plastique contenu étant placé dans un plus grand bac en plastique contenant du plâtre imprégné d'eau pour maintenir l'humidité [36]. Les triatomines nymphales (3e-5e stades) ont été utilisées car elles prennent des repas de sang réguliers mais ne peuvent pas encore voler.

Les poulets ont reçu l'un des trois produits insecticides systémiques (ivermectine, fenbendazole, fluralaner) ou aucun traitement (poulet témoin) à la même date. Les insecticides ivermectine et fenbendazole ont été administrés dans de l'eau en fonction du poids du poulet, avec de l'ivermectine dosée à 0,4 ml/kg de poids corporel (PC) [38] et du fenbendazole dosé à 0,5 ml/kg de PC, comme indiqué sur l'étiquette du produit. Les poulets traités avec ces produits ont reçu la moitié de leur ration quotidienne normale d'eau (150 ml) pour s'assurer qu'ils consomment la dose complète d'insecticide. Ces poulets ont été traités quotidiennement pendant 5 jours consécutifs, comme indiqué par des études antérieures [38]. Les poulets ont également été surveillés quotidiennement tout au long des expériences.

En revanche, les poulets traités au fluralaner ont reçu un petit comprimé oral à croquer contenant le médicament avant leur repas du matin. Des études antérieures ont évalué le fluralaner sous forme de poudre et ont trouvé que 0,5 mg/kg était une dose optimale pour les poulets (G. g. domesticus) pour tuer les acariens rouges de la volaille (Dermanyssus gallinae) [39]. Nous avons calculé que le poids nécessaire de la dose équivalente de fluralaner dans le comprimé à croquer pour chien était de 3,6 mg/kg de poids corporel ; pour le poulet de taille moyenne (1,34 kg), cette dose équivalait à un morceau de mastication d'environ 3 mm de diamètre. Des vers de farine séchés étaient parfois combinés avec la mastication pour améliorer la volonté des poulets à consommer, et les poulets étaient surveillés pour assurer une consommation complète de ce petit aliment. Fluralaner a été administré aux poulets deux fois, à 7 jours d'intervalle [40]. Les plumes de la poitrine du poulet ont été coupées avant l'alimentation en triatomine pour permettre un meilleur accès à la peau pour l'alimentation. Les poulets ont été placés dans un plateau en métal et les corps ont été retenus à l'aide d'un bandage (Healqu, Jersey City, NJ, USA) pour minimiser les mouvements et permettre aux triatomes d'obtenir un repas de sang complet. Le comportement du poulet a été enregistré et évalué sur une échelle de 0 à 2, 0 étant aucun mouvement, 1 étant un mouvement moyen et 2 étant une quantité importante de mouvement.

Les nymphes du troisième au cinquième stade de T. gerstaeckeri ont été autorisées à se nourrir sur les poulets à 0, 3, 7, 14, 28 et 56 DPT. Le jour 0 post-traitement a été défini comme le jour précédant le début du traitement. Au cours de chaque essai, trois T. gerstaeckeri ont été nourris simultanément sur chaque poulet. Ces insectes ont été logés dans des tubes coniques individuels de 50 ml recouverts d'un couvercle en filet. Les tubes ont ensuite été attachés à la zone parée du poulet à l'aide d'un bandage (4 pouces; Healqu, LLC, Jersey City, NJ, États-Unis), avec le filet contre la peau. Cette méthode de fixation permettait aux insectes de coller leur trompe à travers le maillage et de se nourrir du poulet. Les essais ont été menés dans un environnement sombre sous une lumière rouge pour simuler l'environnement d'alimentation des triatomes tout en permettant l'observation [41]. Les triatomines ont été laissées s'alimenter pendant 45 min dans ces conditions. Jusqu'à 75 moustiques femelles Culex quinquefasciatus ont également été nourris sur les poulets en même temps que les triatomes pour évaluer les effets de ces traitements sur la survie. Les moustiques ont été placés sur les pattes du poulet, loin de l'endroit où les triatomes ont été placés. Les données sur les moustiques seront publiées séparément à l'avenir.

Après l'événement d'alimentation sanguine, le niveau d'engorgement et le poids de chaque T. gerstaeckeri ont été enregistrés, et les triatomines ont ensuite été conservées dans un incubateur Peltier (ShelLab, Cornelius, OR, USA) à 26,7 ° C et 50% d'humidité relative. Les engorgements ont reçu un nombre (allant de 0 à 3) pour corréler avec la taille du repas de sang, 0 indiquant non alimenté et 3 indiquant complètement alimenté, similaire aux méthodes utilisées par Reithinger et al. [31]. Une triatomine "nourrie" a été définie comme tout bourgeon individuel avec un score d'engorgement ≥ 1. La survie des individus a été enregistrée toutes les 24 h pendant 10 jours après la date de l'essai. Les personnes qui présentaient des signes de morbidité, définis comme des troubles du mouvement avec des résultats de progression variés, ont été considérées comme décédées dans l'analyse de la mortalité. Tous les individus présentant des signes de morbidité sont décédés au cours de la période d'observation de 10 jours.

Pour quantifier le fluralaner et le fenbendazole dans le sérum de poulet, 2,5 ml de sang de poulet total ont été prélevés dans des tubes de prélèvement sanguin BD Vacutainer® de 3,0 ml (BD Manufacturing, Glenboro, MB, Canada), puis centrifugés à 10 000 tr/min pendant 20 min, après quoi 1,0 ml de sérum a été transféré dans des tubes de microcentrifugeuse (VWR International, Radnow, PA, USA). Les échantillons de sérum ont été stockés pendant environ 3 mois à - 20 ° C avant le test. L'analyse par spectrométrie de masse en tandem par chromatographie liquide ciblée (LC-QQQ) a été réalisée sur un spectromètre de masse TSQ Quantiva (Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA) couplé à une pompe binaire UHPLC (Ultimate3000; Thermo Fisher Scientific). Les paramètres de balayage pour les ions cibles dans le fluralaner et le fenbendazole sont donnés dans le tableau 1. La séparation chromatographique a été réalisée sur une colonne Hypersil Gold 5 µm, 50 mm × 3 mm C18 (Thermo Fisher Scientific) maintenue à 30 ° C, en utilisant une méthode de gradient de solvant. L'acquisition des échantillons et l'analyse des données ont été effectuées à l'aide de l'application Trace Finder 3.3 (Thermo Fisher Scientific). L'analyse a été effectuée à l'Integrated Metabolomics Analysis Core de la Texas A&M University.

Toutes les analyses statistiques ont été effectuées à l'aide de R (version 4.2.2 ; R Foundation for Statistical Computing, Vienne). Les données de survie de Triatoma gerstaeckeri ont été analysées à l'aide du package de courbe de survie de Kaplan – Meier ® : survie) puis comparées à l'aide d'un test de log-rank apparié (package R : survminer). La régression logistique binaire a été utilisée pour évaluer les effets de l'engorgement sur la survie, ainsi que les effets du traitement, du DTC, de l'interaction du traitement et du DTC et du stade de vie sur le succès de l'alimentation (package : stats), avec le comportement du poulet comme effet aléatoire. La caractéristique de fonctionnement du récepteur (ROC) a été utilisée pour le test d'adéquation du modèle (R Package : pROC). Une régression logistique ordonnée a été utilisée pour analyser les effets du traitement, du DTC et du stade de vie sur les niveaux d'engorgement (package R : MASS). Les performances du modèle ont été évaluées à l'aide du test d'ajustement Hosmer-Lemeshow (package R : generalhoslem).

Le succès alimentaire du T. gerstaeckeri variait de 68,6% à 83,3% sous différents traitements de poulet, avec une moyenne de 77,4% (Fig. 1). Parmi les T. gerstaeckeri nourris, la majorité a pris un repas de sang complet (niveau d'engorgement 3). Le traitement, le stade de vie et le DTC n'ont pas affecté de manière significative le succès de l'alimentation et le niveau d'engorgement dans notre analyse (tableau 2). L'analyse ROC de la régression logistique pour les effets variables sur le succès de l'alimentation a donné une valeur d'aire sous la courbe (AUC) de 0,683, indiquant une forme physique acceptable du modèle (fichier supplémentaire 1 : figure S1A). De plus, le produit, le DTC et le stade de vie n'ont pas eu d'effet sur l'engorgement (ou la taille du repas de sang) dans notre analyse. Les tests Hosmer-Lemeshow menés sur le modèle de régression logistique ordinale ont donné une valeur P de 0,3986 (df = 11, χ2 = 11,55), indiquant une forme physique acceptable du modèle.

Succès de l'alimentation et niveau d'engorgement de Triatoma gerstaeckeri qui ont été nourris avec des poulets traités et témoins

Des trois produits, seul le fluralaner a montré un effet sur la survie des insectes T. gerstaeckeri (Fig. 2). À 3 DPT, tous les T. gerstaeckeri qui se sont nourris de poulets traités au fluralaner sont morts dans les 4 jours suivant le gavage. Cependant, l'efficacité du fluralaner a diminué avec le temps : à 7 et 14 DPT, 90 % et 50 % des T. gerstaeckeri qui se sont nourris de poulets traités au fluralaner, respectivement, sont morts dans les 10 jours, et aucune mortalité n'a été observée chez T. gerstaeckeri qui s'est nourri de poulets traités au fluralaner à 28 ou 56 DPT. Pour l'analyse de Kaplan-Meyer, nous avons défini tout insecte qui a vécu au-delà de la période d'observation de 10 jours comme vivant 11 jours, indiquant que les insectes avaient vécu au-delà de la plage observable. La survie de T. gerstaeckeri variait selon le score d'engorgement, dans lequel les insectes avec un score d'engorgement de 3 étaient 77 % moins susceptibles de mourir que ceux avec un score d'engorgement de 1 (régression logistique, valeur P = 0,01, rapport de cotes [OR] 0,23, intervalle de confiance à 95 % [IC] 0,08–0,64 ; tableau 2). Il y avait 100% de survie pour les insectes qui se nourrissaient des poulets témoins, traités à l'ivermectine et au fenbendazole à tous les moments. L'analyse ROC effectuée sur ce modèle était corrélée à une valeur AUC de 0,659, indiquant une forme physique acceptable du modèle (fichier supplémentaire 1 : figure S1B).

Courbes de survie de Kaplan-Meyer pour les triatomes qui se sont nourris sur des poulets traités au fluralaner (a) et les triatomes qui se sont nourris sur des poulets témoins non traités (b). La courbe de survie à 56 DPT a été comparée à d'autres avec un niveau alpha de 0,05. DPT, jours après le traitement

Les concentrations sériques de fluralaner chez le poulet n'avaient pas de tendance constante observée dans les DPT et les réplicats, qui variaient de 93,5 ng/ml à une valeur inférieure à la limite de quantification (2,5 ng/ml) (tableau 3). Tous les échantillons de sérum étaient en dessous de la limite inférieure de quantification pour le fenbendazole (< 5 ng/ml).

Nous rapportons ici pour la première fois que l'alimentation sanguine de poulets traités au fluralaner a entraîné une mortalité ultérieure chez les triatomes. Ces résultats soulignent davantage le potentiel du fluralaner en tant que médicament efficace contre la xénointoxication, et fournissent une preuve de concept pour l'ajout de la volaille aux interventions ciblées sur l'hôte pour la gestion de la maladie de Chagas. Le fluralaner fait partie de la classe des isoxazolines et a été utilisé dans des produits pour traiter les ectoparasites de divers animaux, notamment les chiens, les chats et, plus récemment, les poulets [39, 40]. Aux États-Unis et ailleurs, le fluralaner est l'ingrédient actif d'un médicament oral à croquer administré aux chiens pour traiter les puces et les tiques sous le nom de Bravecto® (Merck Animal Health USA, Rahway, NJ, USA).

Le traitement au fluralaner des poulets a entraîné une mortalité totale de T. gerstaeckeri jusqu'à 14 DPT. Ces résultats correspondaient aux mesures de concentration de fluralaner dans le sérum de poulet, qui montraient des niveaux détectables à 3, 7 et 14 DPT mais des niveaux inférieurs à la limite détectable à 28 et 56 DPT. Nos résultats corroborent ceux d'études similaires réalisées avec des poulets traités au fluralaner pour le traitement des acariens rouges, dans lesquelles les résultats suggèrent que le produit montre la plus grande efficacité dans les 2 premières semaines de traitement [42]. D'autres études récentes ont trouvé un succès similaire dans l'évaluation de l'utilisation du fluralaner pour le contrôle de la punaise de lit commune Cimex lectularius dans les élevages de volailles [43]. La concentration de fluralaner dans le plasma de poulet à différents DPT était incohérente entre les poulets individuels, peut-être expliquée par la variation de la consommation orale du produit à croquer, bien que les poulets aient été observés pour la consommation complète des granules alimentaires contenant l'insecticide, ou l'hétérogénéité de la concentration de fluralaner dans le comprimé à croquer.

Le fluralaner a déjà été évalué comme un outil potentiel de contrôle de la maladie de Chagas par xénointoxication des chiens domestiques, les auteurs ayant rapporté jusqu'à 100 % de mortalité pendant 7 mois chez Triatoma brasiliensis [30]. Des essais sur le terrain en Argentine ont en outre révélé que le traitement de chiens avec du fluralaner entraînait une réduction des populations de T. infestans [44]. Notre étude révèle le potentiel d'ajout de poulets aux stratégies ciblées sur l'hôte pour la gestion de la maladie de Chagas, et les recherches futures devraient évaluer les effets du fluralaner sur différentes espèces de triatomes, ainsi que sur les triatomes résistants à d'autres insecticides.

Le fenbendazole est un antihelminthique à large spectre de la classe des benzimidazoles et a été évalué chez de nombreux animaux, notamment les bovins, les chiens, les poulets et autres [45]. Safe-Guard® AquaSol (Merck Animal Health USA), un produit qui contient du fenbendazole comme ingrédient actif, est disponible dans le commerce comme additif à l'eau de boisson des poulets. Bien que le fenbendazole ne soit pas connu pour avoir une activité contre les ectoparasites [46], c'est l'un des rares médicaments antiparasitaires étiquetés pour une utilisation chez la volaille aux États-Unis. Nous n'avons observé aucune mortalité chez T. gerstaeckeri se nourrissant de poulets traités au fendbendazole à 3 DPT et au-delà. Toutes les concentrations plasmatiques de fenbendazole étaient inférieures à 5 ng/ml, ce qui indique que la concentration minimale provoquant la mortalité chez T. gerstaeckeri est supérieure à 5 ng/ml.

L'ivermectine est un endectocide appartenant à la classe des lactones macrocycliques qui a été utilisé pour traiter les parasites intestinaux des chiens, des poulets, des chats et d'autres animaux [47]. C'est l'ingrédient actif d'Ivomec® Pour-On (Boehringer Ingelheim, Biberach, Allemagne), qui est un produit commercial disponible sous forme de solution à verser pour traiter les parasites intestinaux chez les bovins, ainsi qu'utilisé hors étiquette comme additif alimentaire et additif pour l'eau [38]. Il a récemment été évalué comme traitement des ectoparasites, y compris les punaises de lit et les moustiques [38, 43, 48]. Les études pharmacocinétiques de l'ivermectine ont montré qu'elle atteint une concentration maximale immédiatement après le traitement et peut atteindre la limite de quantification en 24 h [49]. De même, Nyguyen et al. ont constaté que les niveaux d'ivermectine dans le sérum de poulet chutaient rapidement, les niveaux dans le sérum culminant 24 h après le traitement et continuant d'avoir un effet significatif sur la mortalité des moustiques uniquement jusqu'à 3 DPT ; à 5 DTP, les niveaux étaient devenus inférieurs à la concentration létale, entraînant une mortalité de 50 % (LC50) [38]. Des expériences réalisées sur des triatomes ont révélé que si 83,3 % des triatomes qui avaient ingéré des repas de sang de chiens contenant de l'ivermectine mouraient dans les 24 heures, la mortalité était réduite à seulement 13 % au jour 6 [34]. Bien que l'ivermectine puisse entraîner une mortalité élevée des arthropodes, son effet semble être limité aux premiers jours de traitement, probablement en raison de facteurs tels qu'une détoxification rapide, une élimination du sang et un taux métabolique élevé [43]. Compte tenu de l'intérêt de notre étude pour identifier les interventions à dose unique plutôt que les interventions à usage continu, la conception de notre étude n'a pas pris en compte la période aiguë pendant laquelle l'ivermectine est censée tuer les vecteurs hématophages. Ces résultats suggèrent finalement que l'ivermectine peut ne pas être efficace pour le traitement à long terme des ectoparasites [43], à moins que la dose ne soit administrée de manière cohérente.

Pas tous les T. gerstaeckeri qui ont été appliqués à un poulet en train de se nourrir de sang. Pour considérer le rôle du mouvement des poulets dans le succès de l'alimentation, nous avons inclus le comportement des poulets comme effet aléatoire dans la régression logistique. Nous avons constaté que le DPT, le stade de vie et le traitement n'affectaient pas de manière significative le succès de l'alimentation des triatomes. Des études antérieures ont montré que dans certains cas, les insectes, tels que les phlébotomes, peuvent être repoussés par un hôte traité avec un insecticide [50] mais pourraient ensuite détourner le vecteur vers des hôtes non traités à proximité, tels que les humains. Cela pourrait influencer la dynamique de transmission des parasites en incitant les vecteurs à éviter de se nourrir de chiens traités et à se nourrir plutôt d'humains. Cependant, nous n'avons trouvé aucune différence dans le succès de l'alimentation entre les traitements et, par conséquent, nos résultats n'ont suggéré aucun effet répulsif de T. gerstaeckeri dans aucun des produits évalués.

Alors que nous nous attendions à trouver qu'un engorgement plus élevé serait corrélé à un pourcentage plus élevé de mortalité, nous avons constaté que T. gerstaeckeri avec une valeur d'engorgement de 3 était moins susceptible de mourir que les insectes avec une valeur d'engorgement de 1 (tableau 2). Bien qu'un repas de sang plus important puisse être supposé contenir une dose plus élevée d'insecticide, les concentrations d'insecticide n'ont pas montré de tendance constante dans le plasma des poulets traités dans notre étude (tableau 3).

En combinaison avec la xénointoxication d'autres hôtes triatomes courants, tels que les chiens et les chats, le traitement des poulets avec des insecticides systémiques peut permettre de contrôler les triatomes dans l'environnement du domicile et du péridomicile. Les produits Fluralaner peuvent être administrés aux poulets sous forme de friandises orales, comme démontré dans cette étude, ou sous forme d'additif liquide à l'eau, comme cela a été fait avec Exzolt™ (Merck Animal Health USA), le produit à base de volaille pour le contrôle des acariens de la volaille. Exzolt ™ n'est actuellement pas approuvé par la Food and Drug Agency des États-Unis, bien que ce produit doive être évalué pour le contrôle d'autres arthropodes hématophages, tels que les triatomes. La xénointoxication peut être particulièrement efficace lorsqu'elle est utilisée en combinaison avec d'autres méthodes de contrôle, y compris les modifications du logement et la pulvérisation d'insecticides.

Les résultats de cette étude démontrent que le fluralaner induit la mortalité de T. gerstaeckeri après que ces insectes aient pris un repas de sang de poulets traités au fluralaner. La xénointoxication des poulets peut être utilisée comme méthode potentielle pour contrôler la transmission vectorielle de T. cruzi, l'agent étiologique de la maladie de Chagas.

Les données à l'appui des conclusions de la présente étude sont incluses dans l'article. Les données utilisées et/ou analysées au cours de cette étude sont disponibles auprès de l'auteur correspondant sur demande raisonnable.

Jours post-traitement

Gomez-Ochoa SA, Rojas LZ, Echeverria LE, Muka T, Franco OH. Tendances mondiales, régionales et nationales de la maladie de Chagas de 1990 à 2019 : une analyse complète de l'étude sur la charge mondiale de morbidité. Globe Coeur. 2022;17:5

Article PubMed PubMed Central Google Scholar

Lidani KCF, Andrade FA, Bavia L, Damasceno FS, Beltrame MH, Messias-Reason IJ, et al. La maladie de Chagas : de sa découverte à un problème de santé mondial. Avant Santé Publique. 2019;7:166.

Article PubMed PubMed Central Google Scholar

Monteiro FA, Weirauch C, Felix M, Lazoski C, Abad-Franch F. Évolution, systématique et biogéographie des triatomes, vecteurs de la maladie de Chagas. J Adv Parasitol. 2018;99:265–344.

Article Google Scholar

Barr SC. Maladie de Chagas canine (trypanosomiase américaine) en Amérique du Nord. Vet Clin North Am Small Anim Pract. 2009;39:1055–64.

Article PubMed Google Scholar

Roellig DM, Ellis AE, Yabsley MJ. Transmission orale de Trypanosoma cruzi avec des preuves opposées pour la théorie du carnivore. J. Parasitol. 2009;95:360–4.

Article PubMed Google Scholar

Hodo CL, Hamer SA. Vers un cadre écologique pour évaluer les réservoirs d'agents pathogènes à transmission vectorielle : réservoirs fauniques de Trypanosoma cruzi dans le sud des États-Unis. ILAR J. 2017;58:379–92.

Article CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Busselman RE, Hamer SA. Écologie de la maladie de Chagas aux États-Unis : avancées récentes dans la compréhension de la transmission de Trypanosoma cruzi parmi les triatomes, la faune sauvage et les animaux domestiques et une synthèse quantitative des interactions vecteur-hôte. Annu Rev Anim Biosci. 2021;10:325–48.

Article PubMed Google Scholar

Zecca IB, Hodo CL, Slack S, Auckland L, Hamer SA. Infections à Trypanosoma cruzi et pathologie associée chez les opossums de Virginie vivant en milieu urbain (Didelphis virginiana). Int J Parasitol Parasit Wildl. 2020;11:287–93.

Article Google Scholar

Curtis-Robles R, Meyers AC, Auckland LD, Zecca IB, Skiles R, Hamer SA. Interactions parasitaires entre Trypanosoma cruzi, les vecteurs triatomiques, les animaux domestiques et la faune dans le parc national de Big Bend le long de la frontière entre le Texas et le Mexique. Acta Trop. 2018;188:225–33.

Article PubMed Google Scholar

Gürtler RE, Cecere MC. Lutte contre les vecteurs de la maladie de Chagas. Dans : Guarneri A, Lorenzo M, éditeurs. Triatominae - la biologie des vecteurs de la maladie de chagas entomologie en bref. Cham : Springer Cham ; 2021. p. 491–535.

Chapitre Google Scholar

Gurevitz JM, Gaspe MS, Enriquez GF, Provecho YM, Kitron U, Gürtler RE. Surveillance intensifiée et lutte à base d'insecticides contre le vecteur de la maladie de Chagas, Triatoma infestans, dans le Chaco argentin. PLoS Negl Trop Dis. 2013;7:e2158.

Article PubMed PubMed Central Google Scholar

Gürtler RE, Cecere MC, Lauricella MA, Petersen RM, Chuit R, Segura EL, et al. Incidence de l'infection à Trypanosoma cruzi chez les enfants suite à une réinfestation domestique après la pulvérisation d'insecticide dans le nord-ouest rural de l'Argentine. Am J Trop Med Hyg. 2005;73:95–103.

Article PubMed Google Scholar

Cecere MC, Rodríguez-Planes LI, Vazquez-Prokopec GM, Kitron U, Gürtler RE. Surveillance et contrôle à base communautaire des vecteurs de la maladie de Chagas dans les zones rurales reculées du Chaco argentin : un suivi de cinq ans. Acta Trop. 2019;191:108–15.

Article PubMed Google Scholar

Bustamante DM, Monroy C, Pineda S, Rhodes A, Castro X, Ayala V, et al. Facteurs de risque d'infestation intradomiciliaire par le vecteur de la maladie de Chagas Triatoma dimidiate à Jutiapa, Guatemala. Cad Saude publie. 2009;25 Suppl 1:S83-92.

Giirtler RE, Petersen RM, Cecere MC, Schweigmaun NJ, Chuit R, Guakieri JM, et al. Maladie de Chagas dans le nord-ouest de l'Argentine : risque de réinfestation domestique par Triatoma infestans après une seule application communautaire de deltaméthrine. Trans R Soc Trop Med Hyg. 1994;88:27–30.

Article Google Scholar

Mougabure-Cueto G, Picollo MI. Résistance aux insecticides du vecteur maladie de Chagas : évolution, mécanismes et prise en charge. Acta Trop. 2015;149:70–85.

Article CAS PubMed Google Scholar

Gurevitz JM, Sol Gaspe A, Enri GF, Vassena CV, Alvarado-otegui NA, Provecho YM, et al. Échecs inattendus du contrôle des vecteurs de la maladie de Chagas par pulvérisation de pyréthroïdes dans le nord de l'Argentine. JMed Entomol. 2012;49:1379–86.

Article PubMed Google Scholar

Schofield CJ, Diotaiuti L, Dujardin JP. Le processus de domestication chez Triatominae. Mem Inst Oswaldo Cruz. 1999;94:375–8.

Article PubMed Google Scholar

Wozniak EJ, Lawrence G, Gorchakov R, Alamgir H, Dotson E, Sissel B, et al. La biologie des punaises triatomes originaires du centre-sud du Texas et l'évaluation du risque qu'elles posent pour l'exposition autochtone à la maladie de Chagas. J. Parasitol. 2015;101:520–8.

Article PubMed Google Scholar

Les Triatominae (Hemiptera : Heteroptera : Reduviidae) de Veracruz, Mexique : répartition géographique, redescriptions taxonomiques et une clé. Zootaxons. 2012 ;3487 : 1–23.

Kjos SA, Snowden KF, Olson JK. Biogéographie et prévalence de l'infection à Trypanosoma cruzi des vecteurs de la maladie de Chagas au Texas, États-Unis. Dis zoonose à transmission vectorielle. 2009;9:41–50.

Article PubMed Google Scholar

Klotz SA, Dorn PL, Mosbacher M, Schmidt JO. Kissing bugs aux États-Unis: risque de maladie à transmission vectorielle chez l'homme. Environ Health Insights. 2014;8:49–59.

PubMed PubMed Central Google Scholar

Gürtler RE, Ceballos LA, Ordonez-Krasnowski P, Lanati LA, Stariolo R, Kitron U. Fortes préférences alimentaires de l'hôte du vecteur Triatoma infestans modifiées par la densité du vecteur : implications pour l'épidémiologie de la maladie de Chagas. Troupe de négligence PLoS Dis. 2009;3:e4

Article PubMed PubMed Central Google Scholar

Cecere MC, Gürtler RE, Chuit R, Cohen JE. Effets des poulets sur la prévalence de l'infestation et la densité de population de Triatoma infestans dans les maisons rurales du nord-ouest de l'Argentine. Med Vet Entomol. 1997;11:383–8.

Article CAS PubMed Google Scholar

Minter-Goedbloed E, Croon JJAB. L'insensibilité des poulets à Trypanosoma (Schizotrypanum) cruzi. Trans R Soc Trop Med Hyg. 1981;75:350–3.

Article CAS PubMed Google Scholar

Sallyards M, Kuypers K, Lara G. Le secteur avicole mexicain poursuit sa croissance régulière. Département de l'agriculture des États-Unis : numéro de rapport GAIN : MX9013 ; 2019. https://apps.fas.usda.gov/newgainapi/api/report/downloadreportbyfilename?filename=Poultry%20and%20Products%20Semi-annual_Mexico%20City_Mexico_3-19-2019.pdf.

Lawal RA, Hanotte O. Diversité des poulets domestiques : origine, distribution et adaptation. Anim Gène. 2021;52:385–94.

Article CAS Google Scholar

OMS/CDS/WHOPES/GCDPPS, Schofield CJ. Challenges of Chagas disease vector control in Central America: position paper/ by C. J .Schofield. 2021. https://apps.who.int/iris/handle/10665/66189. Consulté le 1er novembre 2022.

Gürtler RE, Ceballos LA, Stariolo R, Kitron U, Reithinger R. Effets de l'application topique de fipronil spot-on sur les chiens contre le vecteur de la maladie de Chagas. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2009;103:298–304.

Article PubMed Google Scholar

Queiroga TBD, Gomez LCP, de Sena ER, dos Santos WV, Ferreira HRP, de Araújo-Neto VT, et al. Efficacité insecticide du fluralaner (Bravecto®) contre Triatoma brasiliensis, vecteur majeur de Trypanosoma cruzi au Brésil. Vecteurs parasites. 2021;14:1–9.

Article Google Scholar

Reithinger R, Ceballos L, Stariolo R, Davies CR, Gürtler RE. Lutte contre la maladie de Chagas : les colliers traités à la deltaméthrine réduisent le succès alimentaire de Triatoma infestans chez les chiens. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2005;99:502–8.

Article PubMed Google Scholar

Laiño MA, Cardinal MV, Enriquez GF, Alvedro A, Gaspe MS, Gürtler RE. Une dose orale de fluralaner administrée à des chiens tue les vecteurs de la maladie de Chagas résistants aux pyréthroïdes et sensibles pendant au moins quatre mois. Vétérinaire Parasitol. 2019;268:98–104.

Article PubMed Google Scholar

Loza A, Talaga A, Herbas G, Canaviri RJ, Cahuasiri T, Luck L, et al. Le traitement insecticide systémique du réservoir canin de Trypanosoma cruzi induit des niveaux élevés de létalité chez Triatoma infestans, un vecteur principal de la maladie de Chagas. Vecteurs parasites. 2017;10:1–12.

Article Google Scholar

Dias JCP, Schofield CJ, Machado EMM, Fernandes AJ. Tiques, ivermectine et maladie expérimentale de Chagas. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2005;100:829–32.

Article PubMed Google Scholar

Schwarz A, Helling S, Collin N, Teixeira CR, Medrano-Mercado N, Hume JCC, et al. Protéines salivaires immunogènes de Triatoma infestans : Développement d'un antigène recombinant pour la détection d'une faible infestation de triatomes. PLoS Negl Trop Dis. 2009;3:e532.

Article PubMed PubMed Central Google Scholar

Wormington JD, Gillum C, Meyers AC, Hamer GL, Hamer SA. Modèles d'activité quotidienne de déplacement et d'utilisation des refuges chez Triatoma gerstaeckeri et Rhodnius prolixus (Hemiptera : Reduviidae), vecteurs du parasite de la maladie de Chagas. Acta Trop. 2018;185:301–6.

Article PubMed Google Scholar

Durvasula RV, Taneja J, Cobb K, Dotson EM. Entretien des punaises triatomiques Rhodnius prolixus et Triatoma dimidiata dans des conditions de laboratoire. Dans : Maramorosch K, Mahmood F, éditeurs. Elevage de vecteurs pathogènes animaux et végétaux. Baca Raton : CRC Press ; 2015. p. 96–117.

Google Scholar

Nguyen C, Gray M, Burton TA, Foy SL, Foster JR, Gendernalik AL, et al. Évaluation d'une nouvelle stratégie de contrôle de la transmission du virus du Nil occidental qui cible Culex tarsalis avec des repas de sang contenant des endectocides. PLoS Negl Trop Dis. 2019;13:e0007210.

Article CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Thomas E, Chiquet M, Sander B, Zschiesche E, Flochlay AS. Efficacité et sécurité sur le terrain de la solution de fluralaner à administrer dans l'eau de boisson pour le traitement des infestations de poux rouges de la volaille (Dermanyssus gallinae) dans les élevages commerciaux en Europe. Vecteurs parasites. 2017;10:457.

Article PubMed PubMed Central Google Scholar

Prohaczik A, Menge M, Huyghe B, Flochlay-Sigognault A, le Traon G. Innocuité de la solution buvable de fluralaner, un nouveau traitement antiparasitaire systémique pour les poulets, chez les poules pondeuses après administration orale via l'eau de boisson. Vecteurs parasites. 2017;10:1–7.

Article Google Scholar

Reisenman CE, Lazzari C. Sensibilité spectrale de la réaction photonégative de la punaise suceuse de sang Triatoma infestans (Heteroptera : Reduviidae). J Comp Physiol A. 2006;192:39–44.

Article Google Scholar

Huyghe B, le Traon G, Flochlay-Sigognault A. Innocuité de la solution buvable de fluralaner, un nouveau traitement systémique contre les poux rouges de la volaille, pour les performances de reproduction des éleveurs de poulets. Vecteurs parasites. 2017;10:1–7.

Article Google Scholar

González-Morales MA, Thomson AE, Petritz OA, Crespo R, Haija A, Santangelo RG, et al. Médicaments vétérinaires systémiques pour le contrôle de la punaise de lit commune, Cimex lectularius, dans les élevages avicoles. Vecteurs parasites. 2022;15:431.

Article PubMed PubMed Central Google Scholar

Gürtler RE, Laiño MA, Alvedro A, Enriquez GF, Macchiaverna NP, Gaspe MS, et al. Le traitement des chiens avec du fluralaner a réduit l'abondance de Triatoma infestans résistant aux pyréthroïdes, l'infection à Trypanosoma cruzi et le contact humain-triatomine dans le Chaco argentin. Vecteurs parasites. 2022;15:1–12.

Article Google Scholar

Whitehead ML, Roberts V. Volaille de basse-cour : législation, zoonoses et prévention des maladies. J Small Anim Pract. 2014;55:487–96.

Article CAS PubMed Google Scholar

Londershausen M. Approches des nouveaux parasiticides. Pestic Sci. 1996;18:269–92.

3.0.CO;2-B" data-track-action="article reference" href="https://doi.org/10.1002%2F%28SICI%291096-9063%28199612%2948%3A4%3C269%3A%3AAID-PS478%3E3.0.CO%3B2-B" aria-label="Article reference 46" data-doi="10.1002/(SICI)1096-9063(199612)48:43.0.CO;2-B">Article Google Scholar

Crump A. Ivermectine : un médicament « miracle » énigmatique aux multiples facettes continue de surprendre et de dépasser les attentes. J Antibiot. 2017;70:495–505.

Article CAS Google Scholar

Holcomb KM, Nguyen C, Foy BD, Ahn M, Cramer K, Lonstrup ET, et al. Effets du traitement à l'ivermectine des poulets de basse-cour sur la dynamique des moustiques et la transmission du virus du Nil occidental. PLoS Negl Trop Dis. 2022;16:e0010260.

Article CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Arisova GB. Efficacité des médicaments à base d'ivermectine contre les ectoparasites chez les poulets de chair. World Vet J. 2020; 10: 160–4.

Google Scholar

Miró G, Gálvez R, Mateo M, Montoya A, Descalzo MA, Molina R. Évaluation de l'efficacité d'une combinaison administrée par voie topique d'imidaclopride et de perméthrine contre Phlebotomus perniciosus chez le chien. Vétérinaire Parasitol. 2007;143:375–9.

Article PubMed Google Scholar

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Nous tenons à remercier Macie Garza pour son aide dans la réalisation des expériences et l'enregistrement des données. Nous tenons également à remercier Dayvion Adams pour sa contribution aux premières étapes du développement du projet. Le résumé graphique de ce manuscrit a été créé à l'aide de Biorender.com.

Ce projet a été soutenu par Texas A&M AgriLife Research et USDA NIFA Animal Health and Disease Research Capacity Funding, ainsi que par le Schubot Center for Avian Health.

Département des biosciences vétérinaires intégratives, Texas A&M University, College Station, États-Unis

Cassandra Durden, Keri N. Norman et Sarah A. Hamer

Schubot Center for Avian Health, Department of Veterinary Pathobiology, Texas A&M University, College Station, États-Unis

Cassandra Durden et Sarah A. Hamer

Département d'entomologie, Texas A&M University, College Station, États-Unis

Yuexun Tian & Gabriel L. Hamer

Département des sciences de la volaille, Texas A&M University, College Station, États-Unis

Koyle Knape et John B. Carey

Integrated Metabolomics Analysis Core, Texas A&M University, College Station, États-Unis

Cory Klemashevitch

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CD a écrit la première ébauche du manuscrit. CD et KK ont organisé les études. CD et KK ont surveillé les fermes d'étude et les insectes. CD et YT ont effectué l'analyse statistique des résultats. CK a effectué une analyse par spectrométrie de masse en tandem par chromatographie liquide (LC-QQQ). CD, KK et YT ont participé à la conception de l'étude et à l'interprétation des résultats. Tous les auteurs ont lu et approuvé le manuscrit final.

Correspondance à Gabriel L. Hamer.

Les protocoles d'utilisation des poulets ont été examinés et approuvés par le Comité institutionnel de protection et d'utilisation des animaux de l'Université A&M du Texas (Protocole d'utilisation des animaux IACUC 2021-0109) le 05/11/2021.

Tous les auteurs ont examiné et approuvé ce manuscrit pour soumission.

Les auteurs n'ont aucun intérêt concurrentiel à déclarer.

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Analyse ROC des modèles de régression logistique pour : les facteurs affectant le succès de l'alimentation de Triatoma gerstaeckeri (A) et les facteurs affectant la survie de Triatoma gerstaeckeri (B).

Libre accès Cet article est sous licence Creative Commons Attribution 4.0 International, qui permet l'utilisation, le partage, l'adaptation, la distribution et la reproduction sur tout support ou format, à condition que vous accordiez le crédit approprié à l'auteur ou aux auteurs originaux et à la source, fournissez un lien vers la licence Creative Commons et indiquez si des modifications ont été apportées. Les images ou tout autre matériel de tiers dans cet article sont inclus dans la licence Creative Commons de l'article, sauf indication contraire dans une ligne de crédit au matériel. Si le matériel n'est pas inclus dans la licence Creative Commons de l'article et que votre utilisation prévue n'est pas autorisée par la réglementation légale ou dépasse l'utilisation autorisée, vous devrez obtenir l'autorisation directement du détenteur des droits d'auteur. Pour voir une copie de cette licence, visitez http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/. La renonciation Creative Commons Public Domain Dedication (http://creativecommons.org/publicdomain/zero/1.0/) s'applique aux données mises à disposition dans cet article, sauf indication contraire dans une ligne de crédit aux données.

Réimpressions et autorisations

Durden, C., Tian, ​​Y., Knape, K. et al. Le traitement systémique au fluralaner des poulets entraîne la mortalité de Triatoma gerstaeckeri, vecteur de l'agent de la maladie de Chagas. Vecteurs parasites 16, 178 (2023). https://doi.org/10.1186/s13071-023-05805-1

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Reçu : 09 février 2023

Accepté : 10 mai 2023

Publié: 02 juin 2023

DOI : https://doi.org/10.1186/s13071-023-05805-1

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